Применение ФАВ в размножении крыжовника
Рефераты >> Ботаника и сельское хоз-во >> Применение ФАВ в размножении крыжовника

Сорта:

Садко (сеянец 329-11×Лада). Сорт выведен во ВСТИСП (г. Москва). Среднепозднего срока созревания. Рано вступает в плодоношение. Среднезимостойкий, устойчивый к мучнистой росе и пятнистости. Высокоурожайный (до 6 кг с куста).

Куст среднерослый, мощный, слабо раскидистый, иногда сжатый, с высокой побегообразовательной способностью. Побеги прямые, очень длинные, средней толщины. Сорт слабошиповатый; шипы редкие, короткие, слабые, верхушки побегов без шипов. На многолетних ветвях шипов нет.

Листья среднего размера, ярко-зелённые, осенью красноватого цвета. Листовая пластинка слабо морщинистая, выпуклая. Зубчики тупые, крупные, подогнутые. Основание прямое.

Ягоды (3,4-4,5 г; до 7 г) округлой или округло-овальной формы, светло-красные, красивые, выровненные, с густым восковым налётом, чётким жилкованием, хорошего столового вкуса, с высоким содержанием пектиновых веществ. Вкус приятный. Дегустационная оценка 4,2 балла.

Ягоды отличаются высокими товарными качествами. Транспортабельность высокая. Назначение универсальное. В компотах ягоды не растрескиваются и не обесцвечиваются. Рекомендуется для выращивания в средней полосе России.

Зеленые черенки характеризуются средней укореняемостью.

Велюр (929-164). Происхождение сорта неизвестно. Выведен во ВСТИСП (г. Москвы). Среднепозднего срока созревания. Рано вступает в плодоношение. Зимостойкий, устойчивый к мучнистой росе и септориозу. Высокоурожайный (до 5 кг с куста). Куст среднерослый, слабо раскидистый, со средней побегообразовательной способностью, бесшипный. Побеги прямые, тонкие. Листья среднего размера. Листовая пластинка слабо морщинистая. Зубчики тупые, средние. Основание прямое.

Ягоды (3,5-5,5 г) округлой или округло-овальной формы, красные, выровненные, хорошего столового вкуса, с высоким содержанием пектиновых веществ. Вкус приятный. Дегустационная оценка равна 4,0 баллам. Транспортабельность хорошая. Назначение универсальное. Рекомендуется для выращивания в средней полосе России.

Зеленые черенки характеризуются низкой укореняемостью.

2.2.2 Условия

Исследования проводили в отделе ягодных культур лаборатории плодоводства на опытной плодовой станции МСХА им. К.А. Тимирязева в условиях открытого и защищенного грунта (летние необогреваемые пленочные теплицы, пленочные теплицы, оборудованные автоматизированными туманообразующими установками, ТОУ (рис. 1)), а также в лаборатории регуляторов роста и развития сельскохозяйственных растений МСХА.

Рисунок 1. Пленочная теплица, оборудованная ТОУ.

2.2.3 Методика

Технология выращивания и уход за маточниками общепринятые. Схема посадки: в открытом грунте – 1×3 м, в защищенном грунте – 0,5×1,5 м.

В маточных насаждениях отбирали растения умеренной силы роста, без признаков повреждения болезнями, вредителями, низкими температурами, засухой.

Нарезку черенков проводили по общепринятой методике (Тарасенко М.Т., 1991).

Типы черенков:

зеленые – однородные по расположению в кроне и на побеге

верхушечные – из верхней части побега

В качестве регуляторов роста использовали синтетические физиологически активные вещества: 6-бензиламинопурин (6-БАП), цитодеф, крезацин, крезивал (смесь крезацин : мивал = 1:1).

За 5-7 дней до черенкования маточники обрабатывали раствором Pix 0,4 мл/л.

Черенки высаживали в день черенкования на укоренение в теплицу с туманообразующей установкой по вариантам в пластиковые кассеты диаметром 5 см (рис. 2). Субстрат для укоренения – торф : перлит = 1:1. Черенки укореняли в теплице с ТОУ (распыливание в течение 10-15 секунд, через каждые 5-15 минут и более, в зависимости от погодных условий).

Рисунок 2. Пластиковая кассета с зелеными черенками крыжовника.

В период массового корнеобразования, через месяц после посадки, проводили внекорневые обработки по следующей схеме:

1. контроль

2. 6-бензиламинопурин (6-БАП) 20 мг/л

3. цитодеф (Ц) 40 мг/л

4. крезацин (КЦ) 20 мг/л

5. крезивал (KB) 20 мг/л

6. крезивал (KB) 40 мг/л

7. 6-бензиламинопурин (6-БАП) 20 мг/л + крезацин (КЦ) 20 мг/л

8. цитодеф (Ц) 40 мг/л + крезацин (КЦ) 20 мг/л

9. цитодеф (Ц) 40 мг/л + крезивал (KB) 20 мг/л

10. цитодеф (Ц) 40 мг/л + крезивал (KB) 40 мг/л.

В начале сентября проводили учеты укореняемости и развития черенков. Определяли число и длину корней первого порядка, процент черенков со стандартной корневой сиситемой. Фотосинтетическую активность определяли газметрическим методом на ИК-газоанализаторе ГИП-10 (Аканов Э.Н., 1987).

Затем черенки по вариантам высаживали в летнюю теплицу (10×50) на доращивание. Подготовка почвы в питомнике включала внесение органических, комплексных минеральных удобрений, доломитовой муки и тщательное рыхление почвы.

Весной следующего года проводили учет перезимовавших укоренившихся черенков.

В 2005 году черенки были отобраны для определения эндогенных фитогормонов в августе, в день внекорневой обработки, через 3 суток и через 7 суток после обработки.

Содержание эндогенных фитогормонов (АБК – абсцизовая кислота, ЦТК – цитокинины, ИУК – индолилуксусная кислота) определяли в одной навеске. Навеску растительного материала заливали охлажденным 80%-ным водным метанолом в соотношении 1:20 и оставляли при 4°С в холодильнике на две недели. Затем растительную массу отфильтровывали и метанольный раствор упаривали до водного остатка, который затем подкисляли 1%-ным раствором HCl до рН=2-3. Подкисленный водный остаток очищали 3-кратной экстракцией гексаном в соотношении 1:1. Гексановые экстракты отбрасывали и к водному остатку добавляли 1%-ный раствор антиоксиданта (неозон Д – 1 мл на пробу). Все пробы доводили до одного объема дистиллированной водой. Затем эти растворы трижды экстрагировали на качалке этилацетатом в соотношении 1:1 (30 мин при 200 об/мин). Этилацетатные вытяжки объединяли, упаривали досуха и оставляли для определения абсцизовой и индолилуксусной кислот. Оставшийся после экстракции водный остаток доводили 20%-ным раствором КОН до рН=8 и два раза экстрагировали бутанолом, насыщенным водой (30 мин при 200 об/мин). Бутанольную фракцию упаривали досуха и оставляли для определения цитокининов.

Для определения ИУК и АБК сухой этилацетатный остаток растворяли в 2 мл фосфатного буфера рН=8 и добавляли 0,51 г поливинилпирролидона (Polyclar AT, Serva), помещали на сутки в холодильник (температура +4°С), затем фильтровали. Элюировали фосфатным буфером и собирали во фракции 1-5 АБК и во фракции 6-10 ИУК (объемом 2 мл каждая). Фракции подкисляли 1%-ным раствором HCl до рН=2-3 и два раза экстрагировали диэтиловым эфиром (30 мин при 200 об/мин). Полученные пробы анализировали методом ВЭЖХ.

Условия хроматографирования для определения ИУК: детектор флюоресцентный, Ex=280 нм, Em=350 нм, колонка Микросорб 42×50 RP18, время удерживания 5 мин, скорость потока 0,5 мл/мин.

Условия хроматографирования для определения АБК: детектор флюоресцентный, длина волны 254 нм, колонка Микросорб 42×50 RP18, время удерживания 6 мин, скорость потока 0,5 мл/мин.


Страница: