Молодь белуги в возрасте 40 суток (средняя длина 13,7см, средний вес 9,5г) способны к осморегуляции, обеспечивающей ее адаптацию к солености 12,5‰. При переводе такой молоди из пресной воды в соленую осмолярность сыворотки крови после ее подъема в первые 12 часов солевого воздействия начинает снижаться и через следующие 12 часов воздействия превышает исходный уровень на 16,3%. На 3 сутки адаптации осмолярность сыворотки крови значительно снижается и достигает уровня, которой превышает исходный на 8,2%. Подобную реакцию на солевое воздействие обнаруживает осморегуляторная система молоди белуги несколько меньших размеров.

Молодь белуги того же возраста и выращенная в тех же условиях, что и первая группа молоди, но меньших размеров, которые считаются стандартными (средняя длина 10см, средний вес 3,5г) неспособна поддерживать относительное постоянство осмолярности сыворотки крови. При переводе такой молоди в воду с соленостью 12,5‰ осмолярность сыворотки крови продолжает подниматься после 12 часов солевого воздействия выше осмолярности воды и молодь погибает (Детлаф. Гинзбург, 1954).

Можно заключить, что у молоди белуги осморегуляторная система оказывается сформированной в значительной степени по достижению ее размеров 12 – 13 см, привесе около 6 г. Сформированная осморегуляторная система молоди осетровых проходных форм характеризуется способностью быстро переходить от гипертонического типа осморегуляции к гипотоническому при смене пресной воды на морскую, в результате чего осмолярность сыворотки крови после ее подъема в первые 12 часов солевого воздействия в течении следующих 12 часов начинает быстро снижаться и на третьи сутки адаптации достигает уровня, близкого к исходному ( Вернидуб, 1952).

Для искусственного разведения создания оптимальных условий развития важнее знать не пороговые значения концентрации кислорода, а критические концентрации, ниже которых начинается угнетение дыхания. Критическая концентрация для мальков осетра и севрюги, в отличие от пороговой, при увеличении температуры сильно возрастает. При 11° C она почти равна пороговой, при 18° C равна уже 4,0—4,5 мг/л, при 25° — 5,0 — 5,5 мг/л, а при 27° — 8,25 мг/л и больше.

По данным О. Л. Гордиенко (1953), успешное выращивание молоди белуги возможно при содержании кислорода в воде от 10,0 до 6,5 мг/л. При снижении содержания кислорода до 3,6—3,88 мг/л состояние молоди становится угнетенным, а при 2,32— 1,41 мг/л наступает гибель.

Одним из важных моментов в характеристике условий развития икры является реакция среды. В экспериментальных условиях оптимальная для развития икры реакция среды измеряется рН от 6,4—6,5 до 7,5, а для мальков рН от 7 до 8. Граница выживаемости несколько шире: для икры рН от 6,1 до 8,0, а для мальков от 6,4 до 8,0. В зонах крайних для икры значений рН—от 6,1 до 6,4 и от 7,5 до 8 — уже заметно возрастает количество аномалий развития (Драгомиров, 1961).

Глава 3. Управление половыми циклами у рыб различными методами

В практике искусственного рыборазведения применяют три метода стимулирования созревания половых продуктов у производителей рыб: экологический, физиологический и эколого-физиологический (Мухачев, 2005).

Экологический метод разработан в 30–е годы академиком А. Н. Державиным. Применяется, главным образом при разведении осетровых, лососевых, окуневых и реофильных карповых рыб (Мухачев, 2005). Он считал, что при выдерживании производителей следует создавать условия внешней среды, соответствующие естественным, в которых происходит развитие половых продуктов. Поскольку в природе икра и сперма созревают во время хода рыбы на нерест против течения воды, то этот фактор А. Н. Державин считал основным, влияющим на ускорение созревания половых продуктов. Он рекомендовал для выдерживания и получения зрелых производителей использовать овальные садки длиной 25 м, шириной 6 м и глубиной до 1,2 м, в которых создавалось течение и имитировались речные условия (быстротоки и т. д.). На дно таких садков насыпается галька. Водоснабжение в садке механическое, расход воды 20 л/с. Улучшение циркуляции воды достигается устройством в средней части садка по его длине бетонной" стены протяженностью 19 м. В каждый садок помещают по 50 рыб, самок и самцов раздельно. Наряду с течением в садках создают благоприятный температурный и кислородный режим. Однако опыт работы с такими садками показал, что в них созревает только одна треть производителей, к тому же трудно определить момент, когда надо брать икру (Мильштейн, 1982).

Физиологический метод. Этот метод основан на инъекционном введении производителям препарата гипофиза. Хорошо зарекомендовал себя этот метод при разведении осетровых и карповых рыб.

Гипофиз — железа, расположенная у основания головного мозга. Гормоны гипофиза влияют на рост и развитие организма, на созревание половых продуктов. Заготавливают гипофизы в осенне-зимний период или ранней весной. Извлекаемый у рыб гипофиз помещают в сосуд с химически чистым ацетоном, который несколько раз меняют в течение 12 ч до полного обезжиривания гипофиза. Количество ацетона должно в 10—15 раз превышать объем гипофизов. Повторное использование ацетона недопустимо.

После обезжиривания гипофизы высушивают в затененном месте на фильтровальной бумаге и хранят в сухих плотно закрытых пробирках или целлофановых пакетах с этикетками.

В связи с постоянным ростом масштабов рыборазведения с каждым годом требуется все больше и больше гипофизов, поэтому учеными предложен ряд его заменителей. К числу таких заменителей относится хориогонин (хориальный гонадотропин). Хориогонин, вырабатываемый на заводах медицинской промышленности, в отличие от гормонов гипофиза можно точно дозировать.

Для инъецирования рыб высушенные гипофизы измельчают в фарфоровой ступке, разбавляют физиологическим раствором (6,5 г химически чистой поваренной соли, растворенной в 1 л дистиллированной воды) и растирают до получения однородной кашицы (суспензии). Полученную суспензию гипофиза вводят рыбе шприцем в мышцы спины. Необходимое количество гипофиза определяют в зависимости от температуры воды, пола, массы рыбы и активности препарата. Инъекции дают хорошие результаты только при нерестовых для данного вида рыб температурах воды и при завершении у производителей IV стадии зрелости половых продуктов.

Активность гипофиза определяют по методу Б. Ф. Гончарова. Он заключается в выдерживании пробы икры, отобранной у самки с помощью щупа, в физиологическом растворе с 0,1 %-ным раствором кристаллического альбумина. При добавлении определенного количества гипофиза у икринок растворяется зародышевый пузырек. Наименьшее количество гипофиза, вызвавшее растворение пузырька, является показателем активности гипофиза. Гипофизы рыб разных семейств обладают специфичностью действия. Так, положительная реакция у осетровых наблюдается только при введении им гипофизов, взятых у особей этого же семейства, или при введении гипофиза леща. У большинства видов лучшие результаты дает двукратное введение гипофиза. При первом (предварительном) инъецировании вводят от 1/8 до 1/3 всей дозы препарата. Оставшуюся часть гипофиза используют при второй (разрешающей) инъекции. Самцов, как правило, инъецируют один раз и вводят им в 2 раза меньше гипофиза, чем самкам (Черномашенцев, Мильштейн, 1983).