Влияние экзогенных гормональных соединений на развитие пресноводных гу-бок
Адаптивные и репродуктивные свойства в животном организме обеспечиваются при активном участии гормонального аппарата, который у представителей таксонов низкого филогенетического уровня только начинает изучаться [1]. В модельных экспериментах исследуется влияние гормонов, идентифицированных на других животных, на разные системы (репродуктивные, локомоторные и другие), что позволяет, по аналогии, судить о гормончувствительности животного. Основные молекулярные структуры в функциональных системах живых организмов [2, 3] обнаруживаются практически в полном наборе уже на самых ранних этапах эволюции. Эти структуры представлены ограниченным числом молекул и осуществляют одноименные элементарные функции у представителей многоклеточных и одноклеточных, высших эукариот и прокариот.
Губки обладают организменной и колониальной интеграцией, выражающейся в существовании координированной работы ирригационной системы. Губкам свойственны и восстановительные морфогенезы [4]. Пресноводные губки – это формы со слабо выраженной индивидуальностью зооидов. Интеграцию губок обеспечивают: связи через межклеточное вещество, прямые контакты между клетками, устанавливаемые с помощью странствующих клеток мезохила, и постоянные контакты, устанавливающиеся между клетками в эпителии и мезохиле. Интеграционные механизмы у губок еще не достигли уровня, который соответствует истинной нервной и гуморальной регуляции, но тем не менее они обеспечивают интеграцию многоклеточной индивидуальности, каковой являются многооскулумные губки.
Влияние различных препаратов на стадии жизненного цикла пресноводных губок изучено крайне недостаточно [5, 6]. Целые губки погибали в среде с резерпином, агрегаты, образованные соматическими клетками, нормально развивались, правда, медленнее чем, в контроле. Метилурацил, адреналин, ацетилхолин, резерпин и атропин влияют как на бластогенез (развитие пресноводной губки из геммул), так и на соматический эмбриогенез (развитие из групп соматически клеток).
Цель данного исследования - изучение влияния экзогенных гормональных соединений на развитие губок.
МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ
В эксперименте были использованы следующие препараты с исходной активностью в 1мл (ип): окситоцин (ОКС) - 5ЕД; гифотоцин (ГФ) - 5ЕД; питуитрин (ПТ) - 5ЕД; маммофизин (МФ) - 3ЕД; префизон (ПФ) - 25ЕД; преднизолон (ПДН) - 30МГ в концентрации от 0,00002 до 20 мл ип/л среды содержания животных. Концентрация 0,02 мл ип/л среды принята нами условно как "норма" N.
Два вида губок - Spongilla lacustris L и Ephidatia mulleri Lieberkii; тип - Spongia; класс - Demospongia) были собраны в реке Немонин Полесского района Калининградской области в июне-июле 1989-1992 гг. Экземпляры: геммулы - 4560, колонии - 269, агрегации - 114.
Фиксировалось время прохождения основных стадий соматического эмбриогенеза и бластогенеза.
Бластогенез. |
Соматический эмбриогенез. | |
1. Разрывы оболочек. | ||
2. Агрегация диссоциированных клеток. |
1. Агрегация диссоциированных клеток. | |
3. Образование устойчивых конгломератов. |
2. Образование устойчивых конгломератов. | |
4. Образование спикул. |
3. Образование спикул. | |
5. Образование водоносной системы. |
4. Образование водоносной системы. |
РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
В контрольных группах губок прирост массы колонии был незначительным. Реакция колоний обоих видов на гормональные препараты в концентрации 0,2 мл ип/л среды очень сходна (табл. 1).
Таблица 1
Изменение массы (X±Sx грамм) тела Ephidatia mulleri
Среда |
Масса, X±Sx | |
начало опыта |
конец опыта (25 суток) | |
Контроль |
4,97±0,18 |
5,07±0,18 |
Окситоцин |
4,54±0,19 |
6,70±0,14 |
Гифотоцин |
5,15±0,18 |
6,92±0,15 |
Префизон |
4,77±0,20 |
6,10±0,17 |
Питуитрин |
4,76±0,28 |
5,69±0,17 |
Маммофизин |
4,98±0,17 |
5,46±0,16 |
Преднизолон |
4,76±0,25 |
3,71±0,12 |
Наибольшее действие на прирост массы тела колоний губок оказали окситоцин с гифотоцином (0,49 и 0,33 г/г начальной массы). В префизоне прирост составил 0,28 г/г исходной массы тела колонии. Влияние маммофизина и питуитрина еще слабее. Преднизолон в данной концентрации вызвал заметное и достоверное уменьшение массы тела колонии.
Продолжительность протекания первой стадии бластогенеза после 48-часового промораживания в контрольной группе 240±3.7 часа, без промораживания - 264±3,3 часа, что на 15±1,0 часа больше. При сходной тенденции реагирования на помещение промороженных и непромороженных геммул в среды с тремя концентрациями гормональных препаратов следует отметить достоверность различий сроков протекания первой стадии (раскрытия геммул) в эксперименте от контрольных сроков. Кроме того, непромороженные геммулы обладают большей чувствительностью к примененным гормональным препаратам, причем наибольшее сокращение сроков прохождения этой стадии (72 часа) отмечено в окситоциновой среде 0,2 мл ип/л среды. Преднизолон во всех трех концентрациях или не влияет или несколько затормаживает раскрытие геммул (от 8 до 24 часов). Прохождение геммулами второй и третьей стадий бластогенеза (агрегация диссоциированных клеток и образование устойчивых конгломератов) достоверно гормонозависимо (особенно в среде окситоцина 0,2 мл ип/л среды) и не связано с предварительным промораживанием геммул (табл. 2).